花卉的组培(可用于组织培养的植物有哪些)

可用于组织培养的植物有哪些

几乎所有的植物都可以用组织培养的方式繁殖，但要求的条件与技术较高。

现在植物组织培养技术在生产中应用已经很普遍了，比如花卉中的国兰、洋兰、马蹄莲、安祖花（火鹤）；水果中的火龙果、香蕉、苹果、枣、石榴；林木中的竹子、桉树、柚木；药材中的罗汉果、绞股兰、石斛；蔬菜中的青花菜、芋头、马铃薯等等很多

适合组织培养的植物有哪些啊 ？

理论上什么植物都可以进行组织培养，但是利用组培技术繁殖植物就是为了快速得到大批量优良植株，所以应该选取形状比较优良的植物进行培养，植物的组织器官，茎，叶，芽，都可以培养，根据不同的植物选取不同组织和器官进行培养。也可以从种子培养出无菌苗然后用无菌苗进行接种。

对于经济实惠要看你想购买什么样的植株，如果你想培养的植物比较名贵那就不能考虑这个了，如果想做个简单的培养实验完全可以就地取材，随便找几株植物取其幼嫩的部位进行培养就可以了。

哪些植物常用于组织培养

首先明确组织培养的应用是

1植物快速繁殖，该应用的目的是保持植物原有的优良性状，因此该方法适合于那些具有优良性状但在自然状态下而无性繁殖比较难的植物，如兰花之类的植物。

2、植物脱毒：因病毒会降低产量，因此用于农作物的脱毒，如土豆。草莓之类的作物。

3、生产细胞产品：主要用于濒危植物，植物所含的物质作用比较大，因此采用植物组织培养的方法将其培养到愈伤组织后，使其产生大量产品，而生产周期比较短。如紫杉醇的生产等。

生产上用得最多的植物有马铃薯、草莓、香蕉、甘蔗、甘薯、枸杞、葡萄、杨树及兰花、月季、百合、康乃馨等；还有各种新引进的名、特、优品种及一些名贵药材。

关于植物组织培养的疑惑

首先是脱分化。植物组织培养通常采用已经完全分化的成熟组织，如植物的根，茎，叶等，必须将这些完全分化的外植体去分化 或 脱分化转变成具有未分化状态的愈伤组织。这时你可以进行一下选择：

1，当生长激素含量大于细胞分裂素时,会促进"根原基"的生长，即先生根。

2，当细胞分裂素含量大于生长激素时,会促进"芽原基"的生长，即先发芽。

也就是你可以让愈伤组织先生根 或 先生芽。

关于植物组织培养的问题……

外植体一般选用芽等分生组织的细胞，因为这些细胞分化程度低，且很少带有病毒。

细胞形态结构会发生变化，概括就是 去分化再分化

营养成分不是一直不变，一是植物体在不断消耗，有的时候我们也会进行补充；二是在诱导去分化再分化的时候，就需要调整激素的浓度。

关于植物的组织培养的问题

花粉来进行组织培养，算无性繁殖（没有经过精卵融合成受精卵），培养得到的是单倍体（由配子直接发育成）

植物组织培养与植物细胞培养的区别

一是，植物组织培养是用很多细胞，而植物细胞培养使用一个细胞。

二是，植物组织培养可以得到与母本的植株，而植物细胞培养即可以得到与母本的植株也可以得到单倍体植株(譬如说花粉培养）。

影响组织培养的因素有哪些

1.植物的材料

（1）不同的植物组织，培养的难易程度差别很大。例如，菸草和胡萝卜的组织培养较为容易，而枸杞愈伤组织的芽诱导就比较难。

（2）同一种植物材料，因器官来源及其生理状况、材料的年龄、储存时间的长短等也会影响实验结果。

2.培养基

离体的植物组织和细胞，对营养、环境条件要求相对特殊，需要配制适宜的培养基。植物组织培养常用MS培养基，其主要成分包括：

（1）无机营养：

大量元素：除了C、H、O外还有N、S、P、Mg、K、Ca等

微量元素：Fe、Mn、B、Zn、Cu、Mo、Co、I等

（2）有机营养

维生素、Aa、琼脂、活性炭、烟酸、肌醇、蔗糖等

（3）植物激素

植物激素中生长素和细胞分裂素是启动细胞分裂、脱分化和再分化的关键性激素。在生长素存在的情况下，细胞分裂素的作用呈现加强的趋势。按照不同的顺序使用这两种激素，会得到不同的实验结果。

当同时使用这两种激素时，两者用量的比例影响植物细胞的发育方向。

（4）能量和渗透压

通常植物本身进行光合作用，产生糖类，不需要从外部供给糖，但在植物组织培养进行异养的状况下，大多不能进行光合作用来合成糖类，因此必须哎培养基中新增糖（一般是蔗糖），作为碳源和能源物质，同时糖对保持培养基的渗透压也有重要作用。

（5）PH

3.温度

温度是植物组织培养中成功的重要条件。在植物组织培养中大多采用最适温度，并保持恒温培养，以加速生长。通常采用25加减2摄氏度的温度，对大多数植物来讲是合适的，但也因种类而异。进行菊花组织培养时是18~22度。

4.光照

不同的植物对各种条件的要求往往不同。组织培养中光照也是重要条件，它对生长和分化有很大影响。当然这也和材料的性质、培养基情况以及由于光照而引起的温度上升等方面的因素有关。菊花培养的光照强度为1000~4000lx，每天光照12h。

哪儿可以弄到植物组织培养的培养基

你好，请问你是小批量做试验还是大量生产呢

一般网路有组培相关的公司在卖了，主要是MS培养基

因为不同植物对培养基要求不一样，个人建议有条件自己配，这样才知道怎么去改良配方

如确实需要购买，请留下你的qq或其他联络方式，细谈

欢迎追问，满意请采纳，谢谢

什么叫植物组织陪养，以月季花为例说明植物组织陪养的步骤

　试剂

· 乙醇.

· 吲哚乙酸（ IAA） 或 2 ,4 – D （生长素类似物）.

· 氯化汞（升汞）或次氯酸钠.

· 6- 苄基氨基腺嘌呤（ 6-BA ）

· MS 培养基

·0.1 mol/L NaOH与 0.1 mol/L HCl

配制培养基

（ 1 ）愈伤组织诱导培养基：MS 培养基（蔗糖含量为 10 g/L ,2,4 – D 含量为 2 mg/L ,琼脂10 g/L ）.

（ 2 ）试验培养基：在 MS 培养基中加入 IAA 和 6–BA .

吲哚乙酸（IAA)先用少量 0.1 mol/L NaOH 溶解,6- 苄基氨基腺嘌呤先用少量 0.1 mol/L HCl 溶解,然后用蒸馏水稀释,再加入培养基中.

仪器设备

培养室,高压灭菌锅,水浴锅,解剖刀,三角烧瓶（ 100mL ）,烧杯,量筒,组培瓶,组培盖或封口膜,棉线,接种箱或超净工作台,分析天平,长镊子,剪刀,容量瓶,移液管,牛皮纸.

培养基灭菌

将配好的培养基加入琼脂加热溶解,调至 pH 5.8 ,趁热分装于 100 mL组培瓶中,每瓶约 20 mL .待培养基冷却凝固后,盖上组培盖,或盖上封口膜并用棉线扎牢,然后在高压灭菌锅中 121 ℃（ 1 kg/cm 2 ）下灭菌 20 min .取出组培瓶放在台子上,冷却后备用.接种操作所需的一切用具（如长镊子、解剖刀、剪刀等）及灭菌水,需同时灭菌.

培养步骤　

第一步,将采来的植物材料除去不用的部分,将需要的部分仔细洗干净,如用适当的刷子等刷洗.把材料切割成适当大小,即灭菌容器能放入为宜.置自来水龙头下流水冲洗几分钟至数小时,冲洗时间视材料清洁程度而宜.易漂浮或细小的材料,可装入纱布袋内冲洗.流水冲洗在污染严重时特别有用.洗时可加入洗衣粉清洗,然后再用自来水冲净洗衣粉水.洗衣粉可除去轻度附着在植物表面的污物,除去脂质性的物质,便于灭菌液的直接接触.当然,最理想的清洗物质是表面活性物质—吐温.

第二步是对材料的表面浸润灭菌.要在超净台或接种箱内完成,准备好消毒的烧杯、玻璃棒、70%酒精、消毒液、无菌水、手表等.用70%酒精浸10～30秒.由于酒精具有使植物材料表面被浸湿的作用,加之70%酒精穿透力强,也很易杀伤植物细胞,所以浸润时间不能过长.有一些特殊的材料,如果实、花蕾、包有苞片、苞叶等的孕穗,多层鳞片的休眠芽等等,以及主要取用内部的材料,则可只用70%酒精处理稍长的时间.处理完的材料在无菌条件下,待酒精蒸发后再剥除外层,取用内部材料.

第三步是用灭菌剂处理.表面灭菌剂的种类较多,可根据情况选取1—2种使用见表.第四步是用无菌水涮洗,涮洗要每次3min左右,视采用的消毒液种类,涮洗3-l0次左右.无菌水涮洗作用是免除消毒剂杀伤植物细胞的副作用注意：①酒精渗透性强,幼嫩材料易在酒精中失绿,所以浸泡时间要短,防止酒精杀死植物细胞.②老熟材料,特别是种子等可以在酒精中浸泡时间长一些,如种子可以浸泡5分钟.③升汞的渗透力弱,一般浸泡10分钟左右,对植物材料的杀伤力不大.④漂白粉容易导致植物材料失绿,所以对于幼嫩材料要慎用.⑤在消毒液中加入浓度为0.08—0.12%的吐温20或80（一种湿润剂）,可以降低植物材料表面的张力,达到更好的消毒效果.

植物的组织培养广义又叫离体培养，指从植物体分离出符合需要的组织、器官或细胞，原生质体等，通过无菌操作，在无菌条件下接种在含有各种营养物质及植物激素的培养基上进行培养以获得再生的完整植株或生产具有经济价值的其他产品的技术。狭义是指组培指用植物各部分组织，如形成层、薄壁组织、叶肉组织、胚乳等进行培养获得再生植株，也指在培养过程中从各器官上产生愈伤组织的培养，愈伤组织再经过再分化形成再生植物。

月季组织培养，取芽时要在无病虫害的优良品种单株上进行，选取生长健壮的当年生枝条，取其饱满的未萌芽作为外植体，因枝条顶部和基部的侧芽萌发能力较差，取中部的芽效果最好，也可以选用顶芽作为外植体，但培养效果不如侧芽。将取回的材料用手术刀片切去叶片及叶柄，切成1-2cm的带节茎段，将清理好的材料在自来水下冲洗干净，然后在无菌条件下加入0.1%的升汞溶液灭菌12min，再转入1%-1.5%的次氯酸钠溶液中浸泡10min，取出在无菌水中清洗2-4次；在整个灭菌和清洗过程总，应不停地摇动瓶子，使其充分与消毒液接触，否则会影响消毒和灭菌效果，灭菌后的外植体取出后用无菌滤纸吸干水分待用。

萌生芽会不断长大，并可从茎段上分化出3-4个不定芽，这时可通过侧芽增殖和不定芽再生的方式进行继代增殖，切割出不定芽或将幼芽分切成每段含1-2个节的茎段，转入增殖培养中，每隔4周继代一次。无论进行诱导、增殖、生根培养，培养室的温度都在以21℃左右时效果最好，诱导萌芽的光照为800-1200Ix，光照时间为10-12h/d，增殖及壮苗生根的光照强度较诱导培养时稍强，需2000-3000Ix。月季组培苗的出瓶标准为苗木健壮，苗高2-3cm，具有良好的根系或根原基，有2-3对叶，无叶片黄化或落叶现象，过滤成活率高，过渡后的小苗根系健壮，植株的长势旺盛，叶色正常，无病虫害和浸染症状，下地定植后能够迅速恢复生长。